Резюме

Целта на това проучване беше да се изследват хранителните ефекти на кората от райска ябълка (PP) и етаноловия екстракт PP (PPE) върху производството на яйца, качеството на яйцата и чернодробните липиди в късния етап на производството на яйца при кокошките носачки. Сто и двадесет на 50 седмици стари слоеве Hy-Line Brown (n = 120) са хранени с различни диети. Четири повторени групи от по 6 кокошки всяка бяха разпределени на случаен принцип за 5 диетични лечения. 5-те диетични лечения бяха, както следва: i) CON, базална диета; ii) PP 0,15, CON + 0,15% PP (0,035% танин); iii) PP 0.5, CON + 0.5% PP (0.117% танин); iv) ЛПС 0,075, CON + 0,075% ЛПС (0,03% танин); и v) PPE 0,25, CON + 0,25% PPE (0,11% танин). Общата концентрация на танин на ЛПС е по-висока (p Ключови думи: Кора от хурма, кора от хурма етанолов екстракт, кокошка носач, липид на черния дроб, качество на яйцата

ефекти

ВЪВЕДЕНИЕ

Райска ябълка (Diospyros kaki L.) се отглежда широко в Корея, Япония и Китай. Съдържа много биоактивни съединения, като захари, витамини, флавоноиди, танини, терпеноиди, стероиди, нафтохинони, диетични фибри, каротеноиди, минерали, аминокиселини и липиди (Gross, 1987; Mallavadhani et al., 1998). По принцип райската ябълка е разделена на 2 вида: сладка и стягаща. Стягащата райска ябълка е силно стягаща, когато е малка и незряла. Той е богат на водоразтворим танин, който генерира стягащ вкус и следователно негоден за консумация, дори когато е напълно оцветен (Taira, 1996; Parajuli et al., 2007). За да се премахне стягащият вкус, хурмата се суши на открито след пилинг. По време на процеса на сушене, водоразтворимият хурминен танин образува омрежител чрез реакция на кондензация между неговите хидроксилни групи, като по този начин го прави неразтворим във вода и намалява стягащия вкус (Parajuli et al., 2007). По този начин, добро количество кора от райска ябълка (PP) се губи в страни, където производството е високо.

Танините в растенията и плодовете обикновено служат като антиоксидантни и антипатогенни агенти (Amarowicz et al., 2000; Gorinstein et al., 2000; Gedir et al., 2005). Въпреки това, високите концентрации на танин в храната за животни могат да намалят неговите хранителни стойности (Armanious et al., 1973; Ortiz et al., 1994). Доказано е, че високото ниво на танин (до 2%) намалява производството и качеството на яйцата, когато се добавя в диетата (Potter et al., 1967; Fry et al., 1972)

По-специално сладката райска ябълка съдържа ниво на танин, вариращо от 3% при незрялост до 0% по време на прибиране на реколтата (Taira, 1996). PP има по-висока концентрация на полифеноли, фибри и минерали, отколкото в целия плод и пулпа (Gorinstein et al., 2001). Проведени са няколко проучвания върху РР, за да се изследва неговата биоактивна стойност (Gorinstein et al., 1998; Gorinstein et al., 2001). PP етаноловият екстракт (PPE) играе роля в активността на обръщане на мултирезистентност поради наличието на каротеноиди, флавоноиди и други функционални компоненти (Kawase et al., 2003). Освен това, PP полифенолът проявява инхибиторни действия при висок глюкозо-индуциран оксидативен стрес (Yokozawa et al., 2002).

Доколкото ни е известно, няма други проучвания, описващи диетичните ефекти на PP и неговия екстракт от танин при кокошките носачки. В настоящото проучване изследвахме диетичните ефекти на PP и PPE върху производителността, качеството на яйцата и чернодробните липиди при кокошките носачки.

МАТЕРИАЛИ И МЕТОДИ

Животни и диети

В това проучване бяха използвани сто и двадесет 50-седмични кокошки Hy-Line Brown. Четири повторени групи от по 6 кокошки бяха разпределени на случаен принцип за 5 диетични процедури (3 съседни клетки с 2 кокошки; размери на клетката: 36 × 40 × 42 cm). Преди започване на експеримента на птиците беше разрешен период на адаптация от 1 седмица. Диета на основата на царевично-соево брашно (Таблица 1) е формулирана така, че да отговаря или да надвишава хранителните препоръки на NRC (1994).

маса 1.

Формула и химичен състав на експерименталната диета

Съставки (%) Лечение 1 CONPP 0,15PP 0,5PPE 0,075PPE 0,25
Царевица62,5862.4362.0861,8362,33
Пшеница3.003.003.003.003.00
Лупиново семе4.004.004.004.004.00
Соево ястие13.9613.9613.9613.9613.96
Рапично брашно2.002.002.002.002.00
Месно брашно3.003.003.003.003.00
Варовик9.519.519.519.519.51
Дикалциев фосфат0,550,550,550,550,55
Сол0,250,250,250,250,25
Лопа0,800,800,800,800,80
Холин-хлорид (50%)0,080,080,080,080,08
DL-метионин0,070,070,070,070,07
Минерален микс 2 0.100.100.100.100.10
Витаминен микс 3 0.100.100.100.100.10
Райска ябълка на прах-0,150,50--
Разтворим екстракт от танин---0,0750,25
Изчислен анализ на базалната диета
TMEn (kcal/kg) 2 800
Суров протеин (%) 16.10
Етерен екстракт (%) 2.95
Сурови фибри (%) 3.40
Ca (%) 3.86
Наличен P (%) 0,50
Met + cys (%) 0,65

ПП се събира от фабрики, преработващи сушена райска ябълка. Събраните проби се сушат в продължение на 1 седмица при стайна температура и допълнително се сушат още 1 седмица във въздушен поток (под 40 ° С). Изсушеният PP се смила и съхранява до по-нататъшна употреба. PPE се приготвя съгласно метода от Ahn et al. (2002) с лека модификация. Екстрахирахме 100 g смлени проби от РР, използвайки 300 ml 70% етанол. Сместа се филтрува и филтратът се центрофугира в продължение на 20 минути при 3000 rpm. Супернатантът беше концентриран чрез изпаряване при 40 ° С и след това лиофилизиран. Общите концентрации на танин на РР и РРЕ се определят съгласно метода от AOAC (1995) и съдържанието е съответно 0,235 ± 0,02% и 0,457 ± 0,21% (n = 4). Диетичните лечения бяха, както следва: i) CON, базална диета; ii) PP 0,15, CON + 0,15% PP (0,035% танин); iii) PP 0.5, CON + 0.5% PP (0.117% танин); iv) PPE 0,075, CON + 0,075% PPE (0,034% танин); и v) PPE 0,25, CON + 0,25% PPE (0,114% танин). Кокошките бяха снабдени с храна и вода ad libitum. През целия експериментален период се поддържаха стайна температура от 21 ± 3 ° C и фотопериод от 16 часа светлина и 8 часа тъмнина.

Периодът на хранене продължи 6 седмици. Всички експериментални процедури са одобрени от институционалния комитет по грижа и употреба на животните към университета в Конкук.

Вземане на проби и измервания

Приемът на фураж (g/кокошка/d) се записва ежеседмично за всяка реплика. Скоростта на производство на яйца и масата на яйцата се записват ежедневно и се определят на базата на повторение по време на експеримента. Средното тегло на яйцата се измерва ежеседмично, с изключение на напуканите и меките черупки. Яйцата, снесени през последните три дни от експеримента, бяха използвани за анализ на качествата на яйцата. Три яйца от всяка реплика бяха събрани на случаен принцип. Дебелината, силата и цветът на черупката на яйцата, височината на белтъка и цветът на жълтъка са измерени съгласно метода от Zheng et al. (2012); беше определена единицата Haugh (Haugh, 1937). Събраните яйца се поддържат при стайна температура (22 ± 3 ° C) в продължение на 7 или 14 дни, за да се наблюдава промяната в единицата Haugh.

След 6 седмици експериментално хранене бяха жертвани 8 птици на лечение. Кръвният серум се центрофугира при 1500 rpm в продължение на 10 минути. По време на аутопсията, черният дроб незабавно се отстранява и претегля. Относителното чернодробно тегло на 100 g телесно тегло (BW) се изчислява за всяка кокошка. Данните са изразени като грамове орган на 100 g BW. Серумът и черният дроб се запазват при -20 ° C до по-нататъшен анализ. Активността на глутамино-оксалоцетна трансаминаза (GOT) и глутамин-пирувична трансаминаза (GPT), както и общата концентрация на холестерол (обща C) и липопротеин-холестерол с висока плътност (HDL-C) в серума са измерени съгласно колориметричният метод чрез използване на GOT-GPT комплект за анализ (GOT-GPT комплект за анализ, Asan Pharmaceutical, Hwaseong-si, Корея) и комплект за диагностика на холестерола (комплект за холестерол Е, комплект HDL-холестерол, Youngdong Medical Corporation). Супероксиддисмутазната активност (SOD) се определя чрез колориметрия съгласно метода на Stefan and Gudrun (1974).

Съдържанието на всяка липидна фракция в черния дроб се определя с помощта на Iatroscan (MK-6 TLC/FID анализатор, Iatron Laboratories, Inc., Япония), който представлява комбинация от покрита със силициев слой тънкослойна хроматография и пламъчен йонизационен детектор. Липидите се разтварят и се екстрахират, използвайки метода на Folch et al. (1957) и съдържанието на липиди в черния дроб се открива, използвайки метода от An et al. (1997).