Синди X. Fang

1 Център за сърдечно-съдови изследвания и алтернативна медицина и 2 отдел по кинезиология и здраве, Университет в Уайоминг, Колеж по здравни науки, Ларами, Уайоминг

Фън Донг

1 Център за сърдечно-съдови изследвания и алтернативна медицина и 2 отдел по кинезиология и здраве, Университет в Уайоминг, колеж по здравни науки, Ларами, Вайоминг

Д. Пол Томас

1 Център за сърдечно-съдови изследвания и алтернативна медицина и 2 отдел по кинезиология и здраве, Университет в Уайоминг, колеж по здравни науки, Ларами, Вайоминг

Хенг Ма

1 Център за сърдечно-съдови изследвания и алтернативна медицина и 2 отдел по кинезиология и здраве, Университет в Уайоминг, колеж по здравни науки, Ларами, Вайоминг

Лейлей Той

1 Център за сърдечно-съдови изследвания и алтернативна медицина и 2 отдел по кинезиология и здраве, Университет в Уайоминг, колеж по здравни науки, Ларами, Вайоминг

Джун Рен

1 Център за сърдечно-съдови изследвания и алтернативна медицина и 2 отдел по кинезиология и здраве, Университет в Уайоминг, колеж по здравни науки, Ларами, Вайоминг

Резюме

Подсемейството Foxo на транскрипционните фактори на forkhead, включително Foxo1 (FKHR), Foxo3a (FKHRL-1) и Foxo4 (AFX), е цел надолу по веригата на Akt (20). Akt фосфорилирането води до ядрено изключване (инхибиране) на Foxo. В допълнение към добре установените клетъчни отговори, предизвикани от Foxo, включително диференциация, метаболизъм, пролиферация, оцеляване и атрофия на скелетните мускули (20, 37), този транскрипционен фактор е показан и при атрофия на кардиомиоцитите, включваща повишаване на регулацията на каскада от атрогени (36, 37, 46). В скелетните мускули атрогените се контролират от растежния фактор-Akt-медиирана транскрипционна регулация на Foxo фактори (35, 37). Наскоро беше демонстрирано, че транскрипционните фактори на Foxo се експресират в кардиомиоцитите при регулиране на растежните фактори/Akt сигнализиране. Foxo може да контролира програма за транскрипция на атроген за регулиране на размера на миоцитите надолу по веригата на множество регулатори на сърдечната хипертрофия (40).

МАТЕРИАЛИ И МЕТОДИ

Диетично хранене с високо съдържание на мазнини и серумни параметри.

Ехокардиографска оценка.

Сърдечната геометрия и функция бяха оценени при анестезирани (Avertin 2,5%, 10 μl/g телесно тегло ip) мишки с помощта на двумерна управляема ехокардиография в М-режим (Phillips Sonos 5500), снабдена с 15-6 MHz линеен преобразувател (Phillips Medical Systems, Andover, MD). Дебелината на предната и задната стена и диастолните и систоличните размери на лявата камера са записани от изображения в М-режим, като се използва метод, приет от Американското общество по ехокардиография. Фракционното скъсяване се изчислява от крайния диастоличен диаметър (EDD) и крайния систоличен диаметър (ESD), като се използва уравнението на (EDD-ESD)/EDD. Изчислената ехокардиографска маса на лявата камера (LV) се изчислява като [(LVEDD + дебелина на стената на преградата + дебелина на задната стена) 3 - LVEDD 3] × 1.055, където 1.055 (mg/mm 3) е плътността на миокарда. Сърдечните честоти бяха осреднени за 10 сърдечни цикъла (14).

Изолиране на кардиомиоцити.

След седация кетамин/ксилазин, сърцата бяха отстранени и перфузирани с бикарбонатен буфер на Krebs-Henseleit, съдържащ (в mM) следното: 118 NaCl, 4.7 KCl, 1.2 MgSO4, 1.2 KH2PO4, 25 NaHCO3, 10 HEPES и 11.1 глюкоза. Сърцата се усвояват с колагеназа D в продължение на 20 минути. Левите вентрикули бяха отстранени и смлени, преди да бъдат филтрирани. Добивът на миоцитите е ~ 75%, което не се влияе от диетата с високо съдържание на мазнини. За механично и вътреклетъчно изследване на Ca 2+ са избрани само пръчковидни миоцити с ясни ръбове (12).

Съкращаване и удължаване на клетките.

Механичните свойства на кардиомиоцитите бяха оценени с помощта на система с мек ръб IonOptix (IonOptix, Milton, MA). Миоцитите се поставят в камера, монтирана на сцената на микроскоп Olympus IX-70 и се суперфузират (~ 2 ml/min при 25 ° C) с бикарбонатен буфер на Krebs-Henseleit, съдържащ 1 mM CaCl2. Миоцитите се стимулират полево при 0,5 Hz, освен ако не е посочено друго. Оценени са съкращаването и удължаването на клетките, включително пиково скъсяване (PS) - пиково съкращение; време до PS (TPS) - продължителност на свиване; удължаване на времето до 90% (TR90) - продължителност на релаксация; и максимални скорости на скъсяване/удължаване (± dL/dt) - и максимално развитие и спад на налягането (12).

Вътреклетъчни преходни процеси на Ca 2+.

Кохорта от миоцити се зарежда с фура 2-AM (0.5 цМ) за 10 минути и интензитетът на флуоресценцията се записва с флуоресцентна система с двойно възбуждане на фотоумножител (Ionoptix). Миоцитите се поставят върху обърнат микроскоп на Olympus IX-70 и се изобразяват през обектив Fluor × 40. Клетките бяха изложени на светлина, излъчвана от 75-W лампа и преминаха през 360- или 380-nm филтър, като същевременно бяха стимулирани да се свиват при 0,5 Hz. Флуоресцентните емисии бяха открити между 480–520 nm, а качествената промяна в интензивността на флуоресценцията на фура 2 (FFI) беше изведена от съотношението FFI при двете дължини на вълната (360/380). Времето на разпадане на флуоресценцията (единично или биекспоненциално разпадане) беше изчислено като индикатор за вътреклетъчно изчистване на Ca 2+ (12).

Анализ на каспаза-3.

Активността на каспаза-3 се определя съгласно публикувания метод (23). Накратко, 1 ml PBS се добавя към колба, съдържаща левокамерни тъканни хомогенати преди центрофугиране при 10 000 g при 4 ° С за 10 минути. Супернатантата се изхвърля и хомогенатите се лизират в 100 μl ледено-студен клетъчен лизисен буфер (50 mM HEPES рН 7,4, 0,1% CHAPS, 1 mM DTT, 0,1 mM EDTA и 0,1% NP-40). Анализът се провежда в 96-ямкова плака, като всяка ямка съдържа 30 μl клетъчен лизат, 70 μl буфер за анализ (50 mM HEPES, 0,1% CHAPS, 100 mM NaCl, 10 mM DTT и 1 mM EDTA) и 20 μl каспаза-3 колориметричен субстрат Ac-DEVD-pNA (Sigma). 96-ямковата плака се инкубира при 37 ° С в продължение на 1 час, през което време се оставя каспазата в пробата да разцепи хромофора p-NA от субстратната молекула. Абсорбцията се открива при 405 nm, като активността на каспаза-3 е пропорционална на цветната реакция. Съдържанието на протеин се определя по метода на Брадфорд. Активността на каспаза-3 се изразява като пикомоли на pNA, освободени на микрограми протеин в минута.

Анализ на каспаза-3/7.

Активността на каспаза-3 и каспаза-7 се определя, като се използва Apo-ONE хомогенен комплект за анализ на каспаза-3/7 (Promega, Madison, WI). Каспаза-3 и каспаза-7 са членове на семейството на специфичната за цистеин аспарагинова киселина протеаза (каспаза), които играят ключова роля в апоптозата в клетките на бозайници. Накратко, активността на каспаза-3 и каспаза-7 беше открита в клетки, подложени на апоптоза чрез разцепване на амид на родамин 110, бис-N-CBZ-1-аспартил-1 -глутамил-1-валил-1-аспарагинова киселина (Z- DEVD-R110) субстрат, който съществува като профлуоресцентен субстрат преди анализа. За да извършим анализа на Apo-ONE каспаза-3/7, смесихме и добавихме буфер на каспаза-3/7 и субстрата Z-DEVD-R110 към тъканните хомогенати на лявата камера. При последователно разцепване и отстраняване на DEVD пептидите чрез активност на каспаза-3 и каспаза-7, напускащата група R110 ще стане интензивно флуоресцентна при дължина на вълната на възбуждане 499 nm и дължина на вълната на излъчване 521 nm. Активността на каспаза-3 и каспаза-7 е пряко пропорционална на флуоресценцията R110 и се изразява като нетната флуоресценция (2).

Ex vivo доминантно-отрицателна трансфекция на Foxo3a и Western blot анализ.

Общо извличане на РНК, синтез на cDNA, обратна транскрипция и PCR в реално време.

Анализ на данни.

Данните са средно ± SE. Статистическото сравнение беше извършено от ANOVA, последвано от post hoc тестове на Newman-Keuls. Значимостта е определена като P Таблица 1). Диетичното хранене с високо съдържание на мазнини ad libitum задейства повишена апоптоза на миокарда, както е оценено от анализите за активност на каспаза-3 и каспаза-3/7, което е облекчено от ограничаването на храните с високо съдържание на мазнини (фиг. 1).

кардиомиопатия

Контролът, съобразен с теглото, е ограничение на диетични храни с високо съдържание на мазнини. EDD, краен диастоличен диаметър; ESD, краен систоличен диаметър; LV, лява камера. Данните са средно ± SE; n = не. на животните.

Затлъстяването, предизвикано от диета с високо съдържание на мазнини, е придружено със значително увеличена площ на напречното сечение на кардиомиоцитите, намалено ± dL/dt и удължено TPS и TR90 с нормален PS (фиг. 2), донякъде напомнящо на нашите по-ранни открития (33). В допълнение, кардиомиоцитите от затлъстели мишки, хранени с високо съдържание на мазнини, показват значително повишен изходен вътреклетъчен Ca 2+, потиснат вътреклетъчен Ca 2+ покачване в отговор на електрически стимул (ΔFFI) и намалена скорост на вътреклетъчно разпадане на Ca 2+ (единично или биекспоненциално) крива; Фиг. 3). Тези механични и вътреклетъчни дефекти на Ca 2+ на кардиомиоцитите, свързани със затлъстяването, предизвикано от диета с високо съдържание на мазнини, значително се смекчават от маневра за контрол на теглото. Независимо от това, ограничаването на храната при диета с високо съдържание на мазнини леко, но значително удължава TR90 и биекспоненциалното вътреклетъчно разпадане на Ca 2+, без да се засягат други показатели (Фиг. 2F и and 3D 3D).

Една доста интересна находка от нашето проучване показва, че вирусът DN Foxo3a имитира повишено базово фосфорилиране на Akt и хипертрофичен протеин GATA4 при затлъстяване, свързано с диета с високо съдържание на мазнини. Повишеното регулиране на GATA4 при затлъстяване, предизвикано от диета с високо съдържание на мазнини, се синхронизира с понижаване на регулацията на специфичната за атрофията генна транскрипция за насърчаване на сърдечна хипертрофия и вероятно хипертрофична кардиомиопатия. Това схващане се подсилва от нашите открития, че палмитиновата киселина пряко насърчава експресията на GATA4 в миобластите H9C2. Нивата на палмитинова киселина, преобладаващата наситена свободна мастна киселина, освободена от мастната тъкан, са повишени при затлъстяване и допринасят за свързаните със затлъстяването сърдечно-съдови усложнения (51). Клетъчният механизъм, отговорен за репресирана атрофична генна транскрипция при индуцирано от диета затлъстяване с високо съдържание на мазнини, не е напълно изяснен, въпреки че взаимодействието между транскрипционния коактиватор PGC-1α (активиран от пероксизомен пролифератор рецептор-γ коактиватор) и транскрипционния фактор на Foxo може да играе роля ( 36). По-нататъшно проучване е оправдано, за да се изследва регулацията на атрофия на генната транскрипция след прием на диета с високо съдържание на мазнини със или без развитие на затлъстяване.

Нашите ex vivo данни също така предполагат възможен механизъм за пренасочване между Akt и неговата сигнална молекула Foxo3a надолу по веригата, тъй като трансфекцията на мутантния Foxo3a стимулира Akt фосфорилиране. Този сценарий за пренасочване се подкрепя от схващането, че атрофичният ген атрогин-1 инхибира Akt-зависимата сърдечна хипертрофия чрез убиквитин-зависима коактивация на протеините на вилицата (22). Независимо от това, настоящото ни проучване не успя да открие каквато и да е промяна в експресията на убиквитин в отговор на затлъстяване, предизвикано от диета с високо съдържание на мазнини, като не благоприятства ролята на свързаното с убиквитин разграждане на протеини в сърдечната хипертрофия и сърдечната дисфункция, свързани с диета, предизвикана от мазнини. Убиквитин-протеазомата е бареловидна протеаза, способна да разпознава и унищожава протеини, украсени с най-малко четири остатъка от убиквитин (31). По същия начин нашите данни също показват малка вероятност за ролята на калциневрин в сърдечната хипертрофия и контрактилната дисфункция при диета, предизвикана от затлъстяване с високо съдържание на мазнини.

Атрогин-1 е F-box протеин, който инхибира сърдечната хипертрофия, като участва в зависим от Akt- и убиквитин лигаза път. В резултат на това хипертрофичният промотор калциневрин може да бъде разграден. Предполага се, че атрогин-1 не засяга самата активност на Akt, а по-скоро служи като коактиватор за членовете на транскрипционните фактори на forkhead след Akt (22). Мишки със сърдечна свръхекспресия на атрогин-1 показаха регулирани транскрипционни фактори на вилицата, съпътстващи потискането на сърдечната хипертрофия, докато мишки без атрогин-1 демонстрираха противоположния физиологичен фенотип, което предполага, че атрогин-1 може да наруши сърдечната хипертрофия чрез своите ефекти върху транскрипционните фактори на вилицата (22 ). Това схващане се подкрепя от нашите експериментални данни за потисната експресия на атрогин-1 иРНК и повишено фозално фосфорилиране на Foxo3a (по-малка експресия на активния транскрипционен фактор), въпреки че този процес може да е независим от системата убиквитин-протеазома и калциневрин.

Експериментални ограничения

В заключение, нашето проучване предлага доказателства, че геометричните, миокардни съкратителни и вътреклетъчни аномалии на Ca 2+ при индуцирано затлъстяване с високо съдържание на мазнини могат да бъдат свързани с потиснат транскрипционен фактор на вилицата (повишено фозално фосфорилиране на базалното Foxo3a) и специфична за атрофия генна транскрипция. В светлината на предизвикания от аденовирус DN Foxo3a ефект върху фосфорилирането на Akt и регулирането на хипертрофични протеини, напомнящи диета с високо съдържание на мазнини или палмитинова киселина, нашите данни подкрепят новата хипотеза, че индуцираното от диета затлъстяване с високо съдържание на мазнини (вероятно инсулинова резистентност и диабет тип 2 ) потиска транскрипционния фактор на forkhead чрез хронично активиране на Akt. Активирането на Chronic Akt може да замени програмата за растеж, индуцирана от Foxo. По същия начин други хипертрофични агонисти като ангиотензин II могат да предизвикат инактивация на Foxo протеини в кардиомиоцитите чрез механизъм, зависим от фосфатидилинозитол 3-киназа/Akt. Наложително е да се проучи внимателно ролята на транскрипционните фактори на Akt-forkhead при затлъстяване и индуцирана от диабет сърдечна хипертрофия и хипертрофична кардиомиопатия, така че да се постигнат оптимални терапевтични стратегии, насочени към тази сигнална каскада.

ПРЕДОСТАВЯ

Тази работа беше подкрепена отчасти от Асоциацията на Американската асоциация за сърдечни заболявания в Тихоокеанския регион (# 0355521Z) и Националния институт по здравеопазване Университет на Уайоминг, Северни Скалисти планини, Регионално институционално развитие, мрежа за биомедицински изследвания (# 5P20RR016474).