Свързани термини:

  • Род
  • Хифа
  • Зооспора
  • Оомицети
  • Гъби
  • Паразити
  • Спори
  • Хрилете
  • Aphanomyces

Изтеглете като PDF

преглед

За тази страница

Биология и болести на земноводните

Dorcas P. O’Rourke DVM, MS, DACLAM, Matthew D. Rosenbaum DVM, MS, DACLAM, в лабораторната медицина на животните (трето издание), 2015 г.

Патогенеза и клинични признаци

Сапролегнията колонизира вече съществуващи кожни лезии при водни земноводни. Памучна подложка от гъбични хифи покрива лезията. По-бледите кичури са показателни за остри инфекции, докато по-тъмните постелки показват хроничност. Може да присъства еритематозна или улцерирана кожа. При саламандрите (Crawshaw, 1993; Wright, 1996; Densmore и Green, 2007) лезиите на хромомикоза обикновено са издигнати тъмни възли; те обаче могат да бъдат улцерирани (Ackermann and Miller, 1992; Wright, 1996). Може да се наблюдава и изтощение и загуба на тегло. Фикомикозата произвежда лезии, подобни на тези на хромомикозата (Райт, 1996).

Стрес и болести

9.6.1 Сапролегниаза

Сапролегниазата е заболяване, причинено от Saprolegnia и Achlya spp. и се появява под формата на бели памучни петна върху некротичните тъкани на заразени риби, главно кожата, хрилете, перките, очите и устата. Клиничните признаци на сапролегниаза включват хеморагична язва; ерозия на кожата, перките, хрилете и мускулите; системна микоза на черния дроб, далака, очите и бъбреците и масивна смъртност (Okaeme и Olufemi, 1997). Ниската температура на водата е основна причина за разпространението на това заболяване. Lightner и сътр. (1988) съобщават за 100% смъртност на хибридите на O. mossambicus, O. aureus и tilapia (O. mossambicus × ​​O urolepis hornorum), причинени от Saprolegnia поради ниска температура на водата (Arrumm, 1987) и T. zillii в сладководни водоеми в Нигерия ( Ogbonna and Alabi, 1991). По същия начин El-Sharouny и Badran (1995) установяват, че нилската тилапия и S. galilaeus, заразени със Saprolegnia ferax и Saprolegnia parasitica, страдат от висока смъртност, но S. galilaeus е по-податлив на гъбична инфекция от нилската тилапия.

Два различни патогенни щама на S. parasitica (на име ManS22 и ManS33), свързани с висока смъртност в Нилска тилапия, наскоро бяха идентифицирани и характеризирани в Египет, като ManS22 е новоописан щам (Zahran et al., 2017). И двата щама бяха тествани за патогенност и бяха силно патогенни. Когато здравата тилапия е била изложена на зооспори и на двата щама, кумулативната смъртност достига 88,9% (за ManS22) и 95,6% (за ManS33) за 9 дни. Заболелите риби показват признаци на инфекция с водна плесен, включително памукообразни израстъци по кожата и плавниците, вялост, непостоянно плуване и издигане близо до водни повърхности или почивка на дъното.

Съобщава се и за масова смъртност, причинена от S. parasitica, в египетските рибни стопанства в провинция Кафр Ел-Шейх по време на презимуването (Noor El-Deen et al., 2018). Засегнатите риби са страдали от памучни вълнообразни маси по главата и хрилете, язви по телесната повърхност и задръствания във вътрешните органи. Гъбата се лекува успешно с хуминова киселина в доза 125 ppm в продължение на 10–12 минути в продължение на 3 последователни дни. Калиев перманганат (KMnO4) и водороден прекис (H2O2) също са ефективни при лечението на инфекция с S. parasitica в същия регион (Sherif и Abdel-Hakim, 2016). KMnO4 също играе защитна роля срещу оксидативен стрес в нилската тилапия, заразена със S. ferax (Zahran и Risha, 2013). Измерените показатели на стрес, включително азотен оксид (NO), глутатион (GSH) и супероксиддисмутаза (SOD), и биохимичните параметри, включително общ протеин, албумин, глобулин, аспартат аминотрансфераза (AST) и аланин аминоранфераза (ALT), са намалени в Третирана с KMnO4 риба в сравнение с нетретирана група. В допълнение, пълният адювант на Freund (FCA) може да модулира реакцията на оксидативен стрес при заразени риби и следователно да засили имунния отговор на рибата срещу инфекция с S. ferax.

Принципи на салмонидната култура

Фунгицидно лечение на яйца

При яйцата гъбичната инфекция (напр. Saprolegnia) започва върху мъртвите яйца, но може бързо да се разпространи в живи яйца (Hoffman 1969; Amlacher 1970; Neish and Hughes 1980). Стандартният профилактичен или контролен фунгицид, използван в люпилните, е малахитово зелено (Nelson 1974; Marking 1989). Въпреки това, както в Канада, така и в САЩ, малахитовото зелено не е разрешено за употреба върху хранителни риби (Nelson 1974; Dentler 1982; D. Kieser pers. Comm.). Следователно има голяма нужда да се намери заместител на малахитовото зелено (Schnick 1988). Търсенето на нови фунгициди е широко и добре документирано (Dentler 1982; Bailey 1983a, 1983b, 1984; Bailey and Jeffrey 1989; Schreck et al. 1991; Marking et al. 1994). Тези проучвания са открили няколко алтернативни противогъбични вещества, но повечето са незадоволителни; те обикновено са неефективни, скъпи, трудоемки, неодобрени или опасни по друг начин. Често тези лекарства са тествани in vitro (Oláh и Farkas 1978; Bailey 1983a, 1983b), докато други експерименти показват, че лекарствата са ефективни in vitro, но неефективни in vivo (Bootsma 1973; Schreck et al. 1991).

В Британска Колумбия алтернативните противогъбични стратегии включват солени бани (Edgell et al. 1993). Няколко комбинации от обработка на морска сол, NaCl и CaCl2 бяха тествани върху предварително огледани яйца от чинук сьомга. Установено е, че разтвор на NaCl и CaCl2 (20 ‰; в съотношение 26: 1, направен с 0.7 g безводен CaCl2 и 19.3 g NaCl в 11 вода), прилаган за 1 h три пъти седмично, за контрол на гъбичките; 10 ‰ лечения са неефективни за контрол на гъбичките, а 25 ‰, макар и ефективни за контрол на гъбичките, причиняват повишена смъртност на яйцата. Тейлър и Бейли (1979) контролират гъбички върху инкубиране на яйца от розова сьомга чрез ежедневно третиране с морска вода от 2 до 3 часа.

Маркиране и др. (1994) оценяват ефикасността на 21 химикала срещу чисти гъбични култури на Saprolegnia и срещу яйца от дъгова пъстърва, заразени с Saprolegnia. От тестваните съединения, с 60-минутна експозиция през ден за около 2 седмици, формалинът (при 500 и 1000 ppm) всъщност намалява гъбичната инфекция, докато водородният пероксид (при 1000 ppm) и NaCl (при 30 ‰) контролира гъбичките. Някои химикали, макар и ефективни в контрола на растежа на гъбичките, бяха отхвърлени поради токсичност за яйцата или поради трудности при получаване на регулаторно одобрение. Един химикал, йод, отхвърлен от Marking et al. (1994) поради токсичност за яйцата, е показано от Jensen et al. (в преса) като елементарен йод (не като повидин) при концентрации от 0,2 до 0,5 mg/l, за да бъде ефективен при контролиране на растежа на гъбички при развиване на яйца от сьомга.

Бактерии и бактериофаги като биологични агенти за контрол на болестите в аквакултурите

Сапролегниоза

Saprolegniales са група оомицети, срещани при риби и във водна среда. Saprolegnia, род от този ред, обикновено се признава като сапрофитен опортюнист (Dick, 1990) с няколко вида, паразитиращи по висшите растения и животни (Alexopoulos, 1962). Известно е, че сапролегнията засяга различни сладководни риби (Copland & Willoughby, 1982; Rowland & Ingram, 1991), особено при интензивни условия на земеделие, при които травмата, стресът и лошото или бързо променящо се качество на водата осигуряват идеалните условия за водната плесен да се размножават. Огнищата са резултат от прикрепването на зооспората към кожата на рибата. Това е последвано от покълване и хифална инвазия на епидермиса (Gosper, 1996), обикновено когато имунната функция е отслабена.

Lategan и Gibson (2003) съобщават, че щам Aeromonas media A199 може да инхибира растежа на Saprolegnia sp. инвитро. Предполага се, че антагонизмът е получен от бактериоцин-подобно инхибиторно вещество (BLIS), произведено от щам А199. При четири независими наблюдения in vivo в резервоарите на риби, засегнати от сапролегниоза, ежедневното добавяне на щам A. media A199 към водата в резервоара допринася за бързото възстановяване на засегнатите гостоприемници от патогенна инвазия. При четирите наблюдения няма контрол и е наблюдавана само една риба, която е твърде ниска, за да оправдае статистически анализ.

В проучване на Lategan et al. (2004a) потенциалът на щам A. media A199 като кандидат за биоконтрол на зимна сапролегниоза е тестван по време на огнище на зимата във ферма и в лабораторно изпитване върху сребърен костур, Bidyanus bidyanus. Риби, показващи ранни симптоми на болестта, са взети проби от засегнатото от езерото Saprolegnia и разпределени на случаен принцип в резервоари в лаборатория. Обработките с биоконтрол бяха проведени чрез добавяне на 10 4 - 10 5 щам А199 клетки/ml резервоарна вода, което доведе до значителна разлика в степента на смъртност между риби, изложени на А199 (n = 3 смъртности) и тези в контролните резервоари (n = 7 смъртност) с 35 дни. В изпитателния процес сребърният костур беше третиран със Saprolegnia sp. за три дни със и без инокулация на резервоари за третиране със и без 10 4 - 10 5 щам А199 клетки/ml вода от резервоара.